福爾馬林固定時(shí)，組織中的許多氨基酸殘基在分子內或分子間形成了醛鍵，使得不少抗原決定簇被封閉。同時(shí)，由于甲醛的聚合作用，使蛋白質(zhì)分子間相互交聯(lián)形成大分子網(wǎng)絡(luò )，也導致了抗原決定簇被掩蓋，這就使得相當部分的抗原不能與抗體很好是進(jìn)行反應。因此，抗原修復也是影響免疫組化染色結果的基本因素?？乖迯?Antigen retrieval ，AR)技術(shù)，建立在Fraenkel-conrat等人[1]一系列生物化學(xué)研究，經(jīng)1991年shi等人[2]發(fā)展?？乖迯褪侵甘?、冰凍、火棉膠、塑料切片免疫組織化學(xué)(IHC)前用胰蛋白酶、尿素、表面活性劑、微波緩沖液和金屬鹽等，使被掩蓋的抗原決定簇或變性的抗原重新暴露或抗原性得到一定程度的恢復過(guò)程?？乖迯湍躾ui大程度地恢復在制片等過(guò)程中損失的抗原性，使原來(lái)認為不能在石蠟切片上進(jìn)行IHC的許多抗體獲得了良好的染色結果，成為一種有效的補救措施。本文的目的是概述AR-HIC的發(fā)展、應用和標準化。
一、 AR技術(shù)
加熱AR技術(shù)
微波加熱方法. 在傳統標準方法,經(jīng)脫蠟、脫水和用3%H2O2阻斷內源性過(guò)氧(化)物酶，石蠟切片經(jīng)蒸餾水沖洗，放置在塑料Coplin缸中。加入AR液，如蒸餾水、緩沖液、金屬鹽液、尿素等，蓋上并置家用微波爐加熱5或10分鐘(注意防止切片干躁)。有時(shí)在加熱5分鐘后，間隔1分鐘，再加熱5分鐘(在*個(gè)5分鐘后檢測液體高度)。加熱后，從微波爐取出塑料Coplin缸，冷卻15分鐘。片子經(jīng)蒸餾水沖洗二次后在PBS液中浸5分鐘，才進(jìn)行IHC染色。為了保持一致的加熱條件，必須設定靠近微波爐中心相同的位置及同一編號的Coplin缸 ，按照不同的抗體設定不同的加熱時(shí)間，盡可能的建立標準的加熱條件。
微波(MW)加熱過(guò)程如下：在盒內放入200ml檸檬酸緩沖液(PH6.0±0.1)，并蓋上帶有小孔的蓋子，微波加熱至沸騰;將脫蠟水化后的組織切片置于耐高溫塑料切片架中，放入已沸騰緩沖液中，有作者提供做免疫組化時(shí)采用微波爐中等功率800W[3]，微波爐選用解凍檔的國產(chǎn)家用微波爐(根據目前的研究,建議用醫用微波爐)，中檔繼續處理10-20分鐘;取出微波塑料缸冷卻至室溫，從緩沖液中取出玻片，片子經(jīng)蒸餾水沖洗二次，之后用PBS(PH7.2-7.4)沖洗兩次，每次3分鐘。
盡管有少數作者[4]認為經(jīng)高溫后冷卻這一步省略。在我們觀(guān)點(diǎn)，15分鐘的冷卻必須的幾點(diǎn)理由：1、如這一步省略，對于有些抗體而言，會(huì )降低AR-IHC染色強度。2、突然從高溫到低溫可導致組織片掉片。3、可能引起形態(tài)學(xué)的變化。
單純加熱方法. 將切片放入盛有檸檬酸緩沖液的容器中,置電爐(600W)上加熱至沸騰，并持續10min 。Shi等人[2]用單純加熱方法與微波加熱方法比較IHC染色強度，顯示兩種方法導致相同的染色強度。
高壓加熱方法. Shin等人[5]發(fā)展了含水高壓鍋煮沸方法，來(lái)增強福爾馬林固定的腦組織tau蛋白免疫反應性。將切片連同檸檬酸緩沖液放入高壓鍋內，加熱至產(chǎn)生噴氣，并持續2min，壓力鍋離開(kāi)熱源，加熱長(cháng)短的控制很重要，從組織切片放入緩沖液到高壓鍋到壓力鍋離開(kāi)熱源總時(shí)間在5-8分鐘，時(shí)間過(guò)長(cháng)可能會(huì )使染色背景加深?，F試劑公司提供的大多數抗體都建議使用高壓鍋煮沸方法，這幾年的實(shí)踐表明，采取此方法可避免假陽(yáng)、陰性，使IHC染色效果更佳。
非加熱AR技術(shù)
非加熱AR技術(shù)包括酶消化、酸水解等方法。目前，主要是酶消化，酶消化是以化學(xué)的方法來(lái)打斷醛鍵，修復抗原。
胰蛋白酶消化法.取0.05g或0.1g胰蛋白酶加入100ml0.05%或0.1%PH7.8的無(wú)水氯化鈣水溶液中，溶解即可;或由邁新提供的0.125%的液體胰酶。將切片放入濕盒內37oC溫箱中消化18-20分鐘。
胃蛋白酶消化法 . 用0.1mol/L HCL配制成0.4%的胃蛋白酶;
鏈霉蛋白酶消化法 . 將鏈霉蛋白酶溶于0.5mol/LpH7.4的Tris-HCL中，濃度為o.1%，消化時(shí)間20min。
抗原修復的方法選擇，關(guān)系到組織抗原能否暴露充分，這對免疫組化染色效果有很大影響。因此應當根據不同的抗原特點(diǎn)，采用不同的修復方法。對某些細胞內抗原(如Fas、Bax、FⅧ等)和細胞間質(zhì)抗原(如Laminin、CoIV等)則需要用酶消化法處理切片。常用的消化酶為胰蛋白酶和胃蛋白酶。一般說(shuō)來(lái)，胰蛋白酶消化能力較胃蛋白酶弱，主要用于細胞內抗原的消化，胃蛋白酶主要用于細胞間抗原的消化。工作中要認真參照抗體說(shuō)明書(shū)指示進(jìn)行消化酶的選擇，這樣針對性更強，標記效果更理想。
總之,以高壓加熱方法、微波加熱方法較為穩定, 高壓加熱方法效果優(yōu)于微波加熱方法和單純加熱方法。溶液的濃度對修復效果無(wú)任何影響，而PH值則影響較大。緩沖液以檸檬酸緩沖液和Tris-HCL較常用。前人的研究表明，溫度高修復時(shí)間短[6]。鑒別診斷和研究的實(shí)際需要，在抗原修復方法規范研究和應用的基礎上，創(chuàng )用了胰蛋白酶—尿素聯(lián)合消化技術(shù)、鹽酸水解暴露抗原技術(shù)和MW—表面活性劑Triton X—100(MW—TX)修復抗原技術(shù) [7] ?？乖┞痘蚩乖迯头椒ㄝ^多，其中發(fā)MW—枸櫞酸緩沖液使用較多，效果。MW修復抗原的方法是石蠟切片脫蠟、水洗后放入修復液中，用250W的輸出功率2X5min，待冷卻至室溫按常規處理。目前AR過(guò)程已成功應用在BioTek全自動(dòng)免疫組化染色儀中。
二、AR應注意的問(wèn)題
加熱持續時(shí)間和強度是重要的影響因素之一，AR液的PH值、濃度、化學(xué)成分也是重要的影響因素之一。使用低PH值AR液必須使用陰性對照片，以防止定位不準[9]。Shi等人[10]強調修復緩沖液的PH值對某些抗原的修復十分重要,實(shí)驗中我們也發(fā)現要獲得滿(mǎn)意結果必須選擇抗原修復液的zui適PH值。在常規石蠟切片做AR-IHC，采用不同濃度的Alcl3液做AR液，發(fā)現4%的Alcl3取得的染色[11]。在修復的抗原中，金屬鹽可影響蛋白的結構。鄭輝等人[12]使用0.01mmol/LPBS、0.01mol/L檸檬酸緩沖液、0.1mol/L Tris-HCL緩沖液及1mmol/L EDTA-Na2，于微波修復抗原，發(fā)現其陽(yáng)性強度逐漸增強。
高溫抗原修復因其機理相當復雜，對某些存在的問(wèn)題很難用設計對照的方法加以解決，有些抗體在冰凍切片上呈陰性反應，但在石蠟切片用抗原修復后卻能很好的顯示。對某些應表達在胞漿或表達在核內的抗原，經(jīng)過(guò)量修復后，絕大部分表達在核內，例如，P185、Bcl-2、P-gp、Nm23，而有些表達在核內的抗原經(jīng)過(guò)量修復會(huì )出現在胞漿內，例如P53、PcNA、Ki-67等[6]。在使用該方法時(shí)一定小心，對結果的判斷也要客觀(guān)地作出分析，侯寧等人發(fā)現端粒酶逆轉錄酶(TRT)經(jīng)過(guò)抗原修復與不經(jīng)過(guò)抗原修復，其染色效果明顯不同，后者的陽(yáng)性率明顯高于前者[8]。操作中還應注意如下問(wèn)題：
1、熱處理后應注意自然冷卻。
2、熱處理時(shí)要防止切片干燥。
3、應根據不同的抗體選擇合適的抗原修復方法。
4、一批抗原的檢測其溫度和時(shí)間一定保持一致。
5、注意形態(tài)學(xué)結構的改變(一般經(jīng)高溫修復后胞漿會(huì )明顯的破壞，而對細胞核的影響較大，會(huì )出現核破裂，蘇木素淡染等現象，而經(jīng)酶水解的切片，其細胞漿破壞視消化時(shí)間而異，但核破壞較輕)。
6、如果在常用的緩沖液中無(wú)法實(shí)現抗原修復，或經(jīng)修復后抗原定位發(fā)生改變，可改用一些不常用的緩沖液，或加一些螯合劑，如EDTA等可改善某些抗原的修復。
用于IHC消化的酶很多，所選酶的種類(lèi)，使用的濃度，PH值，消化時(shí)間及溫度等均要視組織固定的不同，所檢測抗原的性質(zhì)、組織類(lèi)型的不同而異，應通過(guò)預實(shí)驗摸索確定。使用酶消化的原則：胰蛋白酶和蛋白酶K一般用于細胞內抗原，如Keratin，CEA，GFAP等。胃蛋白酶則主要用于細胞間質(zhì)抗原的檢測，如fibronectin，Laminin，各型膠原等。一般來(lái)言，消化時(shí)間和組織固定的長(cháng)短呈正比。在用酶消化，熱修復后均不能獲得結果的前提下使用抗原修復與酶消化結合的方法，有時(shí)會(huì )取得較為滿(mǎn)意的結果。一般蛋白酶K和微波相結合，但應注意，可能檢測的抗原無(wú)論何種性質(zhì)均會(huì )在核內出現假陽(yáng)性反應[6]。